一、脂肪染色:
(一)苏旦Ⅲ法
试剂配制:
苏旦Ⅲ0.1-0.2g,70%酒精100ml
将苏旦Ⅲ置于70%酒精中,加热饱和,在未冷前过滤,静置一夜。
染色步骤:
1.细胞涂片。
2.70%酒精固定1分钟。
3.放入苏旦Ⅲ酒精溶液中20-30分钟。
4.70%酒精洗去多余的染料。
5.水洗。
6.苏木素复染2-5分钟。
7.1%盐酸酒精分化。
8.水洗,蓝化,甘油封固。
结果:脂肪桔黄或红色。一般用于确定胞浆内空泡究竟是糖原,水变性还是脂滴。
(二)苏丹Ⅳ(猩红)(Sudan Ⅳ)染色法:
试剂配制:
苏丹Ⅳ1-2克加纯酒精70ml,10%氢氧化钠20ml,蒸馏水10ml,制成混合液,略加热,置37℃温箱中1小时,取出冷却后过滤,12小时后即可使用。此液5天内失效,建议配制70%酒精饱和液。
染色步骤:
1.细胞涂片。
2.70%酒精固定1分钟。
3.放入苏旦Ⅳ酒精溶液中20-30分钟。
4.70%酒精洗去多余的染料。
5.水洗。
6.苏木素复染2-5分钟。
7.1%盐酸酒精分化。
8.水洗,蓝化,甘油封固。
结果:脂肪呈猩红色。
(三)油红染色法:
试剂配制:
油红O 0.5g,异丙醇100ml,配成饱和液,长期保存备用。
油红稀释液的配制:取油红饱和液6毫升,加蒸馏水4毫升,静置5-10分钟后过滤后使用。
染色步骤:
1.细胞涂片。
2.70%酒精固定1分钟。
3.蒸馏水洗。
4.油红稀释液染10-15分钟,避光、密封。
5.60%乙醇镜下分化至间质清晰。
6、水洗。
7.Marry氏苏木素复染核。
8.水洗。
9.甘油或甘油明胶封片。
结果:脂肪呈鲜红色,细胞核呈蓝色,间质无色。
二、糖原染色
过碘酸-Schiff(PAS)染色法
试剂配制:
碱性品红1g,活性炭2g,当量盐酸20ml,偏重亚硫酸钠1.5g
Schiff试剂配制
1.碱性品红1g,放入200毫升蒸馏水中,煮沸,搅拌,充分溶解。
2.冷却至50℃时过滤,滤液中加入当量盐酸20毫升。
3.加偏重亚硫酸钠1.5g,置于暗处过夜。
4.加活性2g,摇晃,过滤,以无色为最佳。棕色瓶,4℃冰箱保存。
染色步骤
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2.1%过碘酸水溶液5-10分钟。
3.蒸馏水洗多次。
4.Schiff液10-15分钟。
5.0.5%偏重亚硫酸钠(钾)水溶液洗2次(1-2分钟)
6.流水冲洗10分钟。
7.苏木素复染。(1-2分钟)
8.酒精脱水,二甲苯透明,树胶封固。
结果:糖原红色。
注意:1.阴性对照片用淀粉酶消化处理。
2.糖原容易水解,取材标本最好新鲜,不要经过水洗。
3.固定液用中性福尔马林为佳。
4.如Schiff液发红,再加入少量偏重亚硫酸钠,使液体颜色变清后又可使用
三、粘液染色
(一)阿尔辛蓝过碘酸雪夫(AB-PAS)染色法
试剂配制:
爱先蓝液:爱先蓝8GX1g,蒸馏水97ml,冰醋酸3ml
核固红液:核固红0.1g,硫酸铝5g,蒸馏水97ml
碱性品红1g,活性炭2g,当量盐酸20ml,偏重亚硫酸钠1.5g
Schiff试剂配制
1.碱性品红1g,放入200ml蒸馏水中,煮沸,搅拌,充分溶解。
2.冷却至50℃时过滤,滤液中加入当量盐酸20ml。
3.加偏重亚硫酸钠1.5g,置于暗处过夜。
4.加活性2g,摇晃,过滤,以无色为最佳。棕色瓶,4℃冰箱保存。
染色步骤
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2.蒸馏水洗
3.3%冰醋酸浸5分钟
4.爱先蓝液染10~20分钟
5.蒸馏水洗
6.1%过碘酸水溶液5-10分钟。
7.蒸馏水洗多次。
8.Schiff液10-15分钟。
9.自来水中浸10分钟(经常换水)。
10.酒精脱水,二甲苯透明,树胶封固。
结果:中性粘液呈红色,酸性粘液物质呈蓝色。中性与酸性粘液的混合物质呈紫红色。
(二)Southgate胭脂红染色
试剂配制:
1.Southgate贮备液:胭脂红1g,无水酒精50ml,蒸馏水50ml升,氢氧化铝1g,无水氯化铝0.5g
先将无水酒精和蒸馏水1:1混合,依次加入试剂,搅拌,水浴中煮沸3分钟,冷至室温过滤,并用50%酒精加至总量100ml,磨纱瓶冰箱保存。
2.Southgate稀释液:用前取10ml贮存液加蒸馏水40ml。
染色步骤
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2.苏木素染5~10分钟
3.水洗,1%盐酸酒精分化
4.水洗,蓝化
5、蒸馏水洗
6.Southgate稀释液染30分钟
7.水洗
8.95%酒精洗二次
9.无水酒精脱水,透明,封固
结果:酸性粘液呈红色。
四、淀粉样蛋白
(一)甲基紫法(Jurgens,1875)
试剂配制:
(1)1%甲基紫水溶液:甲基紫(methyl violet)1g,蒸馏水加至100ml
(2)1%蜡酸水溶液:冰醋酸1ml,蒸馏水99ml
操作方法:
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3、1%甲基紫水溶液染3-5分钟。
4、水洗,在镜下观察。
5、1%蜡酸水溶液分化,直至见淀粉样蛋白呈紫红色或红色,胞核呈蓝紫色。
6、流水稍冲洗。
用**树胶封片。或把涂片自然晾干后,用中性树胶封固。
结果:淀粉样蛋白呈紫红色至红色。
注意事项:
1、如无甲基紫,也可用结晶紫代替,同样可获得异色反应。
2、染好后的涂片不能用酒精脱水,因为此染料溶于酒精而立即脱色。
3、染好后的涂片也不宜用甘油明胶封盖。
(二)甲醇刚果红法(改良的Highman)
(1)甲醇刚果红液:刚果红(congo red)0.5g,甲醇80ml,甘油20ml
(2)碱性酒精分化液:氢氧化钾0.2g,80%酒精100ml
操作方法:
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3.甲醇刚果红染液染10~20分钟
4.用碱性乙醇分化液分化数秒
5.水洗
6.苏木素复染2分钟
7.水洗数分钟
8.脱水,透明,封固
结果:淀粉样物呈桔红色。
五、含铁血黄素
普鲁士蓝反应:
试剂配制:
1.2%亚铁氢化钾水溶液:亚铁氢化钾2g,蒸馏水100ml
2.2%盐酸水溶液:盐酸2ml,蒸馏水98ml
3.0.1%沙红(safranine)溶液:沙红0.1g,蒸馏水100ml
染色步骤
1.细胞涂片,95%酒精固定60分钟以上。
2、蒸馏水洗
3.取2%亚铁氢化钾水溶液和2%盐酸水溶液等份混合,滴在涂片上,10~20分钟
4.蒸馏水洗
5.核复染
6.水洗,脱水,透明,封固
结果:含铁血黄素呈蓝色。